Expresión de IL-10, IL-4 e IFN-γ en lesiones activas de piel en niños con urticaria papular por picadura de pulga

Elizabeth García, Silvia Duarte, Camila Calderón, John Mario González, Adriana Cuéllar, Alberto Gómez, Evelyne Halpert, Adriana Rodríguez, .

Palabras clave: urticaria, citocinas, interleucina-4, interleucina-10, interferón gamma

Resumen

Introducción. La urticaria papular por picadura de pulga se conoce como una enfermedad alérgica. Sin embargo, las investigaciones no muestran una clara relación con las enfermedades alérgicas.
Objetivo. Estudiar la expresión de IL-10, IL-4 e IFN-γ, como marcadores de la respuesta efectora de células T en lesiones de piel de pacientes con urticaria papular por picadura de pulga.
Materiales y métodos. Se incluyeron 14 biopsias de lesiones de piel de niños con diagnóstico de urticaria papular por picadura de pulga y 5 biopsias de piel sana obtenidas de niños sometidos a cirugía por enfermedades no inflamatorias. Todas las muestras se obtuvieron de niños menores de 12 años. Se extrajo ARN con trizol y se cuantificaron los niveles de expresión de las citocinas con la técnica de reacción en cadena de la polimerasa en tiempo real.
Resultados. En los pacientes con urticaria papular por picadura de pulga, se encontró amplia diversidad en los niveles de expresión de IFN-γ e IL-10, y valores bajos constantes para IL-4. Se observaron tres perfiles que no corresponden a un patrón común en los pacientes. Las muestras obtenidas de tejidos sanos no presentaron expresión de las citocinas.
Conclusiones. Los datos corresponden a la primera descripción de citocinas que median la respuesta inmunitaria en el sitio de la lesión cutánea en niños con con urticaria papular por picadura de pulga, lo cual indica que la respuesta local es mixta ya que no se encuentra predominio de un fenotipo específico en ninguno de los pacientes.

Descargas

La descarga de datos todavía no está disponible.
  • Elizabeth García Sección de Alergia Pediátrica, Fundación Santa Fe de Bogotá, Bogotá, D.C., Colombia
  • Silvia Duarte Facultad de Medicina, Universidad Militar Nueva Granada, Bogotá, D.C., Colombia
  • Camila Calderón Grupo de Inmunobiología y Biología celular, Facultad de Ciencias, Pontificia Universidad Javeriana, Bogotá, D.C., Colombia
  • John Mario González Grupo de Ciencias Básicas Médicas, Facultad de Medicina, Universidad de los Andes, Bogotá, D.C., Colombia
  • Adriana Cuéllar Grupo de Inmunobiología y Biología celular, Facultad de Ciencias, Pontificia Universidad Javeriana, Bogotá, D.C., Colomb
  • Alberto Gómez Instituto de Genética Humana, Facultad de Medicina, Pontifica Universidad Javeriana, Bogotá, D.C., Colombia
  • Evelyne Halpert Sección de Dermatología Pediátrica, Fundación Santa Fe de Bogotá, Bogotá, D.C., Colombia
  • Adriana Rodríguez Facultad de Odontología, Pontificia Universidad Javeriana, Bogotá, D.C., Colombia

Referencias

1. García E, Halpert E, Rodríguez A, Andrade R, Fiorentino S, García C. Immune and histopathologic examination of flea bite-induced papular urticaria. Ann Allergy Asthma Immunol. 2004;92:446-52.
2. Cuéllar A, Rodríguez A, Halpert E, Rojas F, Gómez A, Rojas A, et al. Specific pattern of flea antigen recognition by IgG subclass and IgE during the progression of papular urticaria caused by flea bite. Allergol Immunopathol. 2010;38:197-202.
3. Cuéllar A, Rodríguez A, Rojas F, Halpert E, Gómez A, García E. Differential Th1/Th2 balance in peripheral blood lymphocytes from patients suffering from flea biteinduced papular urticaria. Allergol Immunopathol (Madrid). 2009;37:7-10.
4. Chomczynski P, Sacchi N. Single-step method of RNA isolation by acid guanidinium thiocyanate-phenol-chloroform extraction. Anal Biochem.1987;162:156-9.
5. Giulietti A, Overbergh L, Valckx D, Decallonne B, Bouillon R, Mathieu C. An overview of real-time quantitative PCR: Applications to quantify cytokine gene expression. Methods. 2001;25:386-401.
6. Bilsborough J, Leung D, Maurer M, Howell M, Boguniewcz M, Yao L, et al. IL-31 is associated with cutaneous lymphocyte antigen-positive skin homing T cells in patients with atopic dermatitis. J Alllergy Clin Immunol. 2006;117:418-25.
7. Thomas D. Analyzing real-time PCR data by the comparative CT method. Nat Protoc. 2008;3:1101-8.
8. Roggen EL, Lindstedt M, Borrebaeck C, Verheyen GR. Interactions between dendritic cells and epithelial cells in allergic disease. Toxicol Lett. 2006;162:71-82.
9. Clark RA, Chong B, Mirchandani N, Brinster NK, Yamanaka K, Dowgiert RK, et al. The vast majority of CLA+ T cells are resident in normal skin. J. Immunol. 2006;176:4431-9.
10. Berg D, Otley CC. Skin cancer in organ transplant recipients: Epidemiology, pathogenesis, and management. J Am Acad Dermatol. 2002;47:1-17.
11. Coffman RL, Carty J. A T cell activity that enhances polyclonal IgE production and its inhibition by interferongamma. J Immunol. 1986;136:949-54.
12. Mosmann TR, Cherwinski H, Bond MW, Giedlin MA, Coffman RL. Two types of murine helper T cell clone. I. Definition according to profiles of lymphokine activities and secreted proteins. J Immunol. 1986;136:2348-57.
13. Teraki Y, Picker LJ. Independent regulation of cutaneous lymphocyte-associated antigen expression and cytokine synthesis phenotype during human CD4+ memory T cell differentiation. J Immunol. 1997;159:6018-29.
14. Matsushita S, Takagi R, Hashimoto K, Higashi T. Qualitative evaluation of adjuvant activities and its application to Th2/17 diseases. Int Arch Allergy Immunol. 2011;155(Suppl.1):2-5.
15. Larsen JM, Bonefeld CM, Poulsen SS, Geisler C, Skov L. IL-23 and T(H)17-mediated inflammation in human allergic contact dermatitis. J Allergy Clin Immunol. 2009;123:486-92.
16. Braga M, Quecchia C, Cavallucci E, Di Giampaolo L, Schiavone C, Petrarca C, et al. T regulatory cells in allergy. Int J Immunopathol Pharmacol. 2011;24(Suppl.):55S-64S.
17. Reefer AJ, Satinover SM, Solga MD, Lannigan JA, Nguyen JT, Wilson BB, et al. Analysis of CD25hiCD4+ "regulatory" T-cell subtypes in atopic dermatitis reveals a novel T(H)2-like population. J Allergy Clin Immunol. 2008;121:415-22.
18. Bluestone J, Mackay C, O´Shea J, Stockinger B. The functional plasticity of T cell subsets. Nat Rev Immunol. 2009;9:811-6.
19. Probst P, Küntzlin D, Fleischer B. TH2-type infiltrating T cells in nickel-induced contact dermatitis. Cell Immunol. 1995;165:134-40.
20. Kapsenberg ML, Wierenga EA, Stiekema FE, Tiggelman AM, Bos JD. Th1 lymphokine production profiles of nickelspecific CD4+T-lymphocyte clones from nickel contact allergic and non-allergic individuals. J Invest Dermatol. 1992;98:59-63.
21. Hamid Q, Boguniewicz M, Leung DY. Differential in situ cytokine gene expression in acute versus chronic atopic dermatitis. J Clin Invest. 1994;94:870-6.
22. Akdis M, Verhagen J, Taylor A, Karamloo F, Karagiannidis C, Crameri R, et al. Immune responses in healthy and allergic individuals are characterized by a fine balance between allergen-specific T regulatory 1 and T helper 2 cells. J Exp Med. 2004;199:1567-75.
23. Francis J, Hill S, Durham S. Induction of IL-10+CD4+CD25+ T cells by grass polen immunotherapy. J Allergy Clin Immunol. 2003;111:1255-81.
24. Jutel M, Akdis M, Budak F, Aebischer-Casaulta C, Wrzyszcz M, Blazer K, et al. IL-10 and TGFβ cooperate in the regulatory T cell response to mucosal allergens in normal immunity and specific immunotherapy. Eur J Immunol. 2003;33:1205-14.
Cómo citar
García, E., Duarte, S., Calderón, C., González, J. M., Cuéllar, A., Gómez, A., Halpert, E., & Rodríguez, A. (1). Expresión de IL-10, IL-4 e IFN-γ en lesiones activas de piel en niños con urticaria papular por picadura de pulga. Biomédica, 31(4), 525-31. https://doi.org/10.7705/biomedica.v31i4.410
Sección
Artículos originales