Evaluación preliminar en un modelo animal de la terapia con larvas de Lucilia sericata para el tratamiento de la leishmaniasis cutánea
Resumen
Introducción. La terapia con larvas ha sido ampliamente utilizada para el tratamiento de lesiones ulcerativas de la piel; existen registros de enfermedades, como podopatía diabética, osteomielitis y úlceras varicosas, en las cuales el uso de la terapia con larvas ha promovido la cicatrización de la lesión en presencia de patógenos bacterianos resistentes a los antibióticos convencionales.
Objetivo. Realizar una prueba piloto de terapia con larvas de Lucilia sericata sobre lesiones cutáneas producidas por Leishmania amazonensis.
Materiales y métodos. En el presente trabajo se empleó un diseño experimental en animales ( Mesocricetus aureatus, tres réplicas) con la finalidad de analizar las variaciones del tamaño de la lesión por leishmaniasis antes y después de la terapia con larvas de L. sericata, utilizando criterios para la evaluación de la terapia tales como tamaño de la lesión, tiempo de aplicación y presencia de edema y secreción.
Resultados. Indican una cicatrización efectiva y curación de las lesiones localizadas después de la terapia con larvas de L. sericata (80% a 100% de reducción del área de la lesión en 12 horas).
Discusión. Los resultados preliminares indican que las larvas de moscas L. sericata son de uso potencial como terapia natural alternativa médica y veterinaria para la leishmaniasis cutánea.
Descargas
Referencias bibliográficas
2. Herwald BT, Berman JD. Recommendations for treating leishmaniasis with sodium stibogluconate (pentostam) and review of pertinent clinical studies. Am J Trop Med Hyg. 1992;46:296-306.
3. Scorza JV, Morales C, Petit Y, Vásquez L, Rojas E, Scorza JV. Síntesis de un complejo antimonial pentavalente (Ulamina) y su aplicación experimental para el tratamiento de leishmaniasis cutánea localizada en Venezuela. Bol Malariol San Amb. 2006;1:59-65.
4. Bofante R, Barroeta S. Leishmanias y leishmaniasis en América con especial referencia en Venezuela. Barquisimeto: Editorial Lara; 2002. p. 270
5. Brenzan MA, Nakamura CV, Pardo Dias Filho B, Ueda-Nakamura T, Young MC, Aparacio Garcia Cortz D. Antileishmanial activity of crude extract and courin from Calophyllum brasiliense leaves against Leishmania amazonensis. Parasitol Res. 2007;101:715-22.
6. Fitzpatrick M. Tiny "surgeons" prove surprisingly effective. JAMA. 2000;284:2306-7.
7. Sherman RA, Sherman J, Gilead L, Lipo M, Mumcuoglu KY. Maggot debridement therapy in out-patients. Arch Phys Med Rehabil. 2001;82:1226-9.
8. Sherman RA, Wyle F, Vulpe M. Maggot therapy for treating pressure ulcers in spinal cord injury patients. J Spinal Cord Med. 1995;18:71-4.
9. Sherman RA. A new dressing design for use with maggot therapy. Plast Reconstr Surg. 1997;100:451-6.
10. Sherman RA. Maggot debridement in modern medicine. Infect Med. 1998;15:651-6.
11. Sherman RA, Wyle FA. Low-cost, low-maintenance rearing of maggots in hospitals, clinics and schools. Am J Trop Med Hyg. 1996;54:38-41.
12. Thomas S, Andrews AM, Hay NP, Bourgoise S. The anti-microbial activity of maggot secretions: results of a preliminary study. J Tissue Viability. 1999;9:127-32.
13. Guevara P, Rojas E, González N, Scorza JV, Añez N, Valera M, et al. Presence of Leishmania braziliensis in blood samples from cured patients to different stages of immunotherapy. Clin Diagn Lab Immunol. 1994;1: 385-9.
14. Juárez E. Evaluación en sueros de la quimioterapia específica, por las técnicas de ELISA, PCR e hibridación de pacientes con leishmaniasis cutánea del Estado Trujillo (Tesis). Trujillo: Núcleo Universitario "Rafael Rangel"-Universidad de Los Andes; 2004. p. 72.
15. Ministerio de Ciencia y Tecnología. Código de Bioética y Bioseguridad. Caracas: Editorial MCT; 2002. p. 35.
16. Thomas S, Jones M. Maggots and the battle against MRSA. Bridgend: SMTL.; 2000. p. 123-40.
17. Mumcuoglou KY, Miller J, Mumcuoglu M, Friger M, Tarshis M. Destruction of bacteria in the digestive tract of the maggot of Lucilia sericata (Diptera: Calliphoridae). J Med Entomol. 2001;38:161-6.
18. Erdmann GR, Bromel M, Gassner G, Freeman TP, Fischer A. Antibacterial activity demonstrated by culture filtrates of Proteus mirabilis isolated from screwwork (Cochliomyia homivorax) (Diptera: Calliphoridae). J Med Entomol. 1984;21:159-64.
19. Erdmann GR, Khalil SK. Isolation and identification of two antibacterial agents produced by a strain of Proteus mirabilis isolated from larvae of the screwworm (Cochliomyia hominovorax) (Diptera: Calliphoridae). J Med Entomol. 1986;23:208-11.
20. Parnés A, Lagan KM. Larval therapy in wound management: A review. Int J Clin Pract. 2007;61:488-93.
21. Horobin AJ, Pritchad DL, Shakesheff LM. How do larvae of Lucilia sericata iniciate human wound healing. Eur Cell Mater. 2002;4(Suppl.2):70-1.
22. Daeschlein G, Mumcuoglu KY, Assadian O, Hoffmeister B, Kramer A. In vitro antibacterial activity of Lucilia sericata maggot secretions. Skin Pharmacol Physiol. 2007;20:112-5.
23. Figueroa L, Flores J, Rodríguez S. Método de cultivo de larvas de moscas Lucilia sericata para terapia larval. Parasitol Latinoam. 2007;62:79-82.
24. Anderson GS. Minimum and maximum development rates of some forensically important Calliphoridae (Diptera). J Forensic Sci. 2000;45:824-32.
25. Talari S, Sadr F, Doroodgar A, Talari M, Gharabagh A. Wound myasis caused by Lucilia sericata. Arch Iranian Med. 2004;2:128-9.
Algunos artículos similares:
- Rafael José Vivero, Maria Angélica Contreras-Gutiérrez, Eduar Elías Bejarano, Análisis de la estructura primaria y secundaria del ARN de transferencia mitocondrial para serina en siete especies de Lutzomyia , Biomédica: Vol. 27 Núm. 3 (2007)
- Elsa Nieves, Neudo Buelvas, Maritza Rondón, Néstor González, Las glándulas salivales de dos flebotominos vectores de Leishmania: Lutzomyia migonei (França) y Lutzomyia ovallesi (Ortiz) (Diptera: Psychodidae) , Biomédica: Vol. 30 Núm. 3 (2010)
- Carlos Pérez, Yoanet Solías, Gerzaín Rodríguez, Leishmaniasis cutánea difusa en un paciente con sida , Biomédica: Vol. 26 Núm. 4 (2006)
- María Angélica Contreras, Rafael José Vivero, Eduar Elías Bejarano, Lina María Carrillo, Iván Darío Vélez, Nuevos registros de flebotomíneos (Diptera: Psychodidae) en el área de influencia del río Amoyá en Chaparral, Tolima , Biomédica: Vol. 32 Núm. 2 (2012)
- Luz Adriana Acosta, Karina Mondragon-Shem, Daniela Vergara, Andrés Velez-Mira, Horacio Cadena, Lina Maria Carrillo, Ampliación de la distribución de Lutzomyia longipalpis (Lutz & Neiva, 1912) (Diptera: Psychodidae) en el departamento de Caldas: potencial aumento del riesgo de leishmaniasis visceral , Biomédica: Vol. 33 Núm. 2 (2013)
- Clemencia Ovalle-Bracho, Carolina Camargo, Yira Díaz-Toro, Marcela Parra-Muñoz, Tipificación molecular de Leishmania (Leishmania) amazonensis y especies del subgénero Viannia asociadas a la leishmaniasis cutánea y la mucosa en Colombia: un estudio de concordancia , Biomédica: Vol. 38 Núm. 1 (2018)
- María Angélica Contreras-Gutiérrez, Iván Darío Vélez, Charles Porter, Sandra Inés Uribe, Lista actualizada de flebotomíneos (Diptera: Psychodidae: Phlebotominae) de la región cafetera colombiana , Biomédica: Vol. 34 Núm. 3 (2014)
- Catalina Marceló, Olga Lucía Cabrera, Erika Santamaría, Indicadores de sensibilidad de una cepa experimental de Lutzomyia longipalpis (Diptera: Psychodidae) a tres insecticidas de uso en salud pública en Colombia , Biomédica: Vol. 34 Núm. 4 (2014)
- Emy Luz Sánchez, Gílmar Gabriel Santafé, Omar Leonardo Torres, Diana Lorena Muñoz, Sara María Robledo, Compuestos sintéticos del tipo de estirilquinolinas con actividades leishmanicida y citotóxica , Biomédica: Vol. 34 Núm. 4 (2014)
- José Gabriel Vergara, Daniel Verbel-Vergara, Ana Milena Montesino, Alveiro Pérez-Doria, Eduar Elías Bejarano, Estimación del tiempo límite de detección del gen citocromo b de humanos en hembras de Lutzomyia evansi , Biomédica: Vol. 37 Núm. Sup. 2 (2017): Suplemento 2, Entomología médica, 2017
Estadísticas de artículo | |
---|---|
Vistas de resúmenes | |
Vistas de PDF | |
Descargas de PDF | |
Vistas de HTML | |
Otras vistas |