Primer aislamiento ambiental de Cryptococcus gattii de serotipo B, en Cúcuta, Colombia
Palabras clave:
Cryptococcus, micosis, ambiente, ecología, Colombia, muestreo
Resumen
Introducción. En Cúcuta, Cryptococcus gattii de serotipo B se recupera comúnmente de pacientes inmunocompetentes con criptococosis, pero no ha sido recuperado del ambiente a pesar su alta incidencia, que es de 77 % de los casos reportados.Objetivo. El objetivo de este trabajo fue realizar un extenso muestreo ambiental en Cúcuta, para aislar C. gattii de serotipo B y expandir nuestro conocimiento sobre la ecología y la epidemiología de esta importante levadura.
Materiales y métodos. Se recolectaron y se procesaron muestras asociadas con 3.634 árboles de 40 zonas de Cúcuta y 28 muestras cercanas a las casas de cuatro pacientes con criptococosis causada por C. gattii de serotipo B. El serotipo de los aislamientos recuperados se estableció usando PCR múltiple, el patrón molecular se determinó por RFLP del gen URA5 y la pareja sexual se determinó usando los iniciadores MfαU, MfαL, MFa2U y MFa2L.
Resultados. Se procesaron 4.389 muestras y se recuperó un aislamiento de C. gattii de serotipo B (VGI/a), dos aislamientos de C. gattii de serotipo C (VGIII/α) y tres aislamientos de C. neoformans var. grubii de serotipo A (VNI/α). La densidad de los aislamientos recuperados varió entre 50 y 350 UFC/g de suelo.
Conclusiones. Éste es el primer reporte de la recuperación ambiental de C. gattii de serotipo B en Cúcuta. Sin embargo, por la baja tasa de recuperación de aislamientos únicamente en suelo, el nicho ambiental de C. gattii no se pudo establecer, por lo que es necesario realizar posteriores estudios ambientales en Cúcuta, debido a que este serotipo, no sólo está causando criptococosis, sino también muestra una gran virulencia después del brote ocurrido en Vancouver.
Descargas
Los datos de descargas todavía no están disponibles.
Referencias bibliográficas
1. Bovers M, Hagen F, Boekhout T. Diversity of the Cryptococcus neoformans-Cryptococcus gattii species complex. Rev Iberoam Micol. 2008;25:S4-12.
2. Peachey PR, Gubbins PO, Martin RE. The association between cryptococcal variety and immunocompetent and immunocompromised hosts. Pharmacotherapy. 1998;18:255-64.
3. Speed BR, Dunt D. Clinical and hosts differences between infections with the two varieties of Cryptococcus neoformans. Clin Infect Dis. 1995;21:28-34.
4. Sorrell TC. Cryptococcus neoformans variety gattii. Med Mycol. 2001;39:155-68.
5. Byrnes EJ, Bildfell RJ, Dearing PL, Valentine BA, Heitman J. Cryptococcus gattii with bimorphic colony types in a dog in western Oregon: Additional evidence for expansion of the Vancouver Island outbreak. J Vet Diagn Invest. 2009;21:133-6.
6. Castellá G, Abarca ML, Cabañes FJ. Cryptococcosis and pets. Rev Iberoam Micol. 2008;25:S19-24.
7. Duncan C, Schwantje H, Stephen C, Campbell J, Bartlett K. Cryptococcus gattii in wildlife of Vancouver Island, British Columbia, Canada. J Wildl Dis. 2006;42:175-8.
8. Velagapudi R, Hsueh YP, Geunes-Boyer S, Wright JR, Heitman J. Spores as infectious propagules of Cryptococcus neoformans. Infect Immun. 2009;77:4345-55.
9. Lizarazo J, Linares M, de Bedout C, Restrepo A, Agudelo CI, Castañeda E, et al. Results of nine years of the clinical and epidemiological survey on cryptococcosis in Colombia, 1997-2005. Biomédica. 2007;27:94-109.
10. Lizarazo J, Mendoza M, Palacios D, Vallejo A, Bustamante A, Ojeda E, et al. Criptococosis ocasionada por Cryptococcus neoformans variedad gattii. Acta Med Colomb. 2000;25:171-8.
11. Callejas A, Ordóñez N, Rodríguez MC, Castañeda E. First isolation of Cryptococcus neoformans var. gattii, serotype C, from the environment in Colombia. Med Mycol. 1998;36:341-4.
12. Escandón P, Sánchez A, Martínez M, Meyer W, Castañeda E. Molecular epidemiology of clinical and environmental isolates of the Cryptococcus neoformans species complex reveals a high genetic diversity and the presence of the molecular type VGII mating type a in Colombia. FEMS Yeast Res. 2006;6:625-35.
13. Kidd SE, Hagen F, Tscharke RL, Huynh M, Bartlett KH, Fyfe M, et al. A rare genotype of Cryptococcus gattii caused the cryptococcosis outbreak on Vancouver Island (British Columbia, Canada). PNAS. 2004;101:17258-63.
14. Stephen C, Lester S, Black W, Fyfe M, Raverty S. Multispecies outbreak of cryptococcosis on southern Vancouver Island, British Columbia. Can Vet J. 2002;43:792-4.
15. Ellis DH, Pfeiffer TJ. Natural habitat of Cryptococcus neoformans var. gattii. J Clin Microbiol. 1990;25:1642-4.
16. Escandón P, Quintero E, Granados D, Huérfano S, Ruiz A, Castañeda E. Aislamiento de Cryptococcus gattii serotipo B a partir de detritos de Eucalyptus spp. en Colombia. Biomédica. 2005;25:390-7.
17. Sorrell T, Brownlee A, Ruma P, Malik R, Pfeiffer T, Ellis DH. Natural environmental sources of Cryptococcus neoformans var. gattii. J Clin Microbiol. 1996;34:1261-3.
18. Alcaldía de San José de Cúcuta. [Cited: Jun 24, 2009]. Available:http://www.alcaldiadeCúcuta.gov.co/
19. Instituto de Hidrología, Meterología y Estudios Ambientales (IDEAM). Clima. [Cited: May 21, 2009]. Available: http://www2.ideam.gov.co/atlas/mclima.htm
20. Staib F, Seibold M, Antweiler E, Frohlich B, Weber S, Blisse A. The brown colour effect (BCE) of Cryptococcus neoformans in the diagnosis, control and epidemiology of C. neoformans infections of AIDS patients. Zentralbl Bakteriol Hyg. 1987;266:167-77.
21. Kwon-Chung KJ, Polachek I, Bennett JE. Improved diagnostic medium for separation of Cryptococcus neoformans var. neoformans (serotype A and D) and C. neoformans var. gattii (serotype B and C). J Clin Microbiol. 1982;15:535-7.
22. Casali A, Goulart L, Rosa e Silva L, Ribeiro A, Amaral A, Alves S, et al. Molecular typing of clinical and environmental Cryptococcus neoformans isolates in the Brazilian state Rio Grande do Soul. FEMS Yeast Res. 2003;3:405-15.
23. Ito-Kuwa S, Nakamura K, Aoki S, Vidotto V. Serotype identification of Cryptococcus neoformans by multiplex PCR. Mycoses. 2007;50:277-81.
24. Meyer W, Castañeda A, Jackson S, Huynh M, Castañeda E, IberoAmerican Cryptococcal Study Group. Molecular typing of IberoAmerican Cryptococcus neoformans isolates. Emerg Infect Dis. 2003;9:189-95.
25. Meyer W, Mitchell TG. Polymerase chain reaction fingerprinting in fungi using single primers specific to minisatellites and simple repetitive DNA sequences: Strain variation in Cryptococcus neoformans. Electrophoresis. 1995;16:1648-56.
26. Halliday CL, Bui T, Krockenberger M, Malik R, Ellis DH, Carter DA. Presence of alpha and a mating types in environmental and clinical collections of Cryptococcus neoformans var. gattii strains from Australia. J Clin Microbiol. 1999;37:2920-6.
27. Girish CP, Prabu D, Mitani H, Mikami Y, Menon T. Environmental isolation of Cryptococcus neoformans and Cryptococcus gattii from living trees in Guindy National Park, Chennai, South India. Mycoses. 2010;53:262-4.
28. Randhawa HS, Kowshik T, Chowdhary A, Preeti Sinha K, Khan ZU, Sun S, et al. The expanding host tree species spectrum of Cryptococcus gattii and Cryptococcus neoformans and their isolations from surrounding soil in India. Med Mycol. 2008;46:823-33.
29. Malliaris SD, Steenbergen JN, Casadevall A. Cryptococcus neoformans var. gattii can exploit Acanthamoeba castellanii for growth. Med Mycol. 2004;42:149-58.
30. Lazéra MS, Salmito MA, Londero AT, Trilles L, Nishikawa MM, Wanke B. Possible primary ecological niche of Cryptococcus neoformans. Med Mycol. 2000;38:379-83.
31. Rosario I, Acosta B, Colom F. La paloma y otras aves como reservorio de Cryptococcus spp. Rev Iberoam Micol. 2008;25:S13-8.
32. Kidd SE, Chow Y, Mak S, Bach PJ, Chen H, Hingston AO, et al. Characterization of environmental sources of the human and animal pathogen Cryptococcus gattii in British Columbia, Canada, and the Pacific Northwest of the United States. Appl Environ Microbiol. 2007;73:1433-43.
33. Granados D, Castañeda E. Isolation and characterization of Cryptococcus neoformans varieties recovered from natural sources in Bogotá, Colombia, and study of ecological conditions in the area. Microb Ecol. 2005;49:282-90.
34. Quintero E, Castañeda E, Ruiz A. Distribución ambiental de Cryptococcus neoformans en el departamento de Cundinamarca - Colombia. Rev Iberoam Micol. 2005; 22:93-8.
2. Peachey PR, Gubbins PO, Martin RE. The association between cryptococcal variety and immunocompetent and immunocompromised hosts. Pharmacotherapy. 1998;18:255-64.
3. Speed BR, Dunt D. Clinical and hosts differences between infections with the two varieties of Cryptococcus neoformans. Clin Infect Dis. 1995;21:28-34.
4. Sorrell TC. Cryptococcus neoformans variety gattii. Med Mycol. 2001;39:155-68.
5. Byrnes EJ, Bildfell RJ, Dearing PL, Valentine BA, Heitman J. Cryptococcus gattii with bimorphic colony types in a dog in western Oregon: Additional evidence for expansion of the Vancouver Island outbreak. J Vet Diagn Invest. 2009;21:133-6.
6. Castellá G, Abarca ML, Cabañes FJ. Cryptococcosis and pets. Rev Iberoam Micol. 2008;25:S19-24.
7. Duncan C, Schwantje H, Stephen C, Campbell J, Bartlett K. Cryptococcus gattii in wildlife of Vancouver Island, British Columbia, Canada. J Wildl Dis. 2006;42:175-8.
8. Velagapudi R, Hsueh YP, Geunes-Boyer S, Wright JR, Heitman J. Spores as infectious propagules of Cryptococcus neoformans. Infect Immun. 2009;77:4345-55.
9. Lizarazo J, Linares M, de Bedout C, Restrepo A, Agudelo CI, Castañeda E, et al. Results of nine years of the clinical and epidemiological survey on cryptococcosis in Colombia, 1997-2005. Biomédica. 2007;27:94-109.
10. Lizarazo J, Mendoza M, Palacios D, Vallejo A, Bustamante A, Ojeda E, et al. Criptococosis ocasionada por Cryptococcus neoformans variedad gattii. Acta Med Colomb. 2000;25:171-8.
11. Callejas A, Ordóñez N, Rodríguez MC, Castañeda E. First isolation of Cryptococcus neoformans var. gattii, serotype C, from the environment in Colombia. Med Mycol. 1998;36:341-4.
12. Escandón P, Sánchez A, Martínez M, Meyer W, Castañeda E. Molecular epidemiology of clinical and environmental isolates of the Cryptococcus neoformans species complex reveals a high genetic diversity and the presence of the molecular type VGII mating type a in Colombia. FEMS Yeast Res. 2006;6:625-35.
13. Kidd SE, Hagen F, Tscharke RL, Huynh M, Bartlett KH, Fyfe M, et al. A rare genotype of Cryptococcus gattii caused the cryptococcosis outbreak on Vancouver Island (British Columbia, Canada). PNAS. 2004;101:17258-63.
14. Stephen C, Lester S, Black W, Fyfe M, Raverty S. Multispecies outbreak of cryptococcosis on southern Vancouver Island, British Columbia. Can Vet J. 2002;43:792-4.
15. Ellis DH, Pfeiffer TJ. Natural habitat of Cryptococcus neoformans var. gattii. J Clin Microbiol. 1990;25:1642-4.
16. Escandón P, Quintero E, Granados D, Huérfano S, Ruiz A, Castañeda E. Aislamiento de Cryptococcus gattii serotipo B a partir de detritos de Eucalyptus spp. en Colombia. Biomédica. 2005;25:390-7.
17. Sorrell T, Brownlee A, Ruma P, Malik R, Pfeiffer T, Ellis DH. Natural environmental sources of Cryptococcus neoformans var. gattii. J Clin Microbiol. 1996;34:1261-3.
18. Alcaldía de San José de Cúcuta. [Cited: Jun 24, 2009]. Available:http://www.alcaldiadeCúcuta.gov.co/
19. Instituto de Hidrología, Meterología y Estudios Ambientales (IDEAM). Clima. [Cited: May 21, 2009]. Available: http://www2.ideam.gov.co/atlas/mclima.htm
20. Staib F, Seibold M, Antweiler E, Frohlich B, Weber S, Blisse A. The brown colour effect (BCE) of Cryptococcus neoformans in the diagnosis, control and epidemiology of C. neoformans infections of AIDS patients. Zentralbl Bakteriol Hyg. 1987;266:167-77.
21. Kwon-Chung KJ, Polachek I, Bennett JE. Improved diagnostic medium for separation of Cryptococcus neoformans var. neoformans (serotype A and D) and C. neoformans var. gattii (serotype B and C). J Clin Microbiol. 1982;15:535-7.
22. Casali A, Goulart L, Rosa e Silva L, Ribeiro A, Amaral A, Alves S, et al. Molecular typing of clinical and environmental Cryptococcus neoformans isolates in the Brazilian state Rio Grande do Soul. FEMS Yeast Res. 2003;3:405-15.
23. Ito-Kuwa S, Nakamura K, Aoki S, Vidotto V. Serotype identification of Cryptococcus neoformans by multiplex PCR. Mycoses. 2007;50:277-81.
24. Meyer W, Castañeda A, Jackson S, Huynh M, Castañeda E, IberoAmerican Cryptococcal Study Group. Molecular typing of IberoAmerican Cryptococcus neoformans isolates. Emerg Infect Dis. 2003;9:189-95.
25. Meyer W, Mitchell TG. Polymerase chain reaction fingerprinting in fungi using single primers specific to minisatellites and simple repetitive DNA sequences: Strain variation in Cryptococcus neoformans. Electrophoresis. 1995;16:1648-56.
26. Halliday CL, Bui T, Krockenberger M, Malik R, Ellis DH, Carter DA. Presence of alpha and a mating types in environmental and clinical collections of Cryptococcus neoformans var. gattii strains from Australia. J Clin Microbiol. 1999;37:2920-6.
27. Girish CP, Prabu D, Mitani H, Mikami Y, Menon T. Environmental isolation of Cryptococcus neoformans and Cryptococcus gattii from living trees in Guindy National Park, Chennai, South India. Mycoses. 2010;53:262-4.
28. Randhawa HS, Kowshik T, Chowdhary A, Preeti Sinha K, Khan ZU, Sun S, et al. The expanding host tree species spectrum of Cryptococcus gattii and Cryptococcus neoformans and their isolations from surrounding soil in India. Med Mycol. 2008;46:823-33.
29. Malliaris SD, Steenbergen JN, Casadevall A. Cryptococcus neoformans var. gattii can exploit Acanthamoeba castellanii for growth. Med Mycol. 2004;42:149-58.
30. Lazéra MS, Salmito MA, Londero AT, Trilles L, Nishikawa MM, Wanke B. Possible primary ecological niche of Cryptococcus neoformans. Med Mycol. 2000;38:379-83.
31. Rosario I, Acosta B, Colom F. La paloma y otras aves como reservorio de Cryptococcus spp. Rev Iberoam Micol. 2008;25:S13-8.
32. Kidd SE, Chow Y, Mak S, Bach PJ, Chen H, Hingston AO, et al. Characterization of environmental sources of the human and animal pathogen Cryptococcus gattii in British Columbia, Canada, and the Pacific Northwest of the United States. Appl Environ Microbiol. 2007;73:1433-43.
33. Granados D, Castañeda E. Isolation and characterization of Cryptococcus neoformans varieties recovered from natural sources in Bogotá, Colombia, and study of ecological conditions in the area. Microb Ecol. 2005;49:282-90.
34. Quintero E, Castañeda E, Ruiz A. Distribución ambiental de Cryptococcus neoformans en el departamento de Cundinamarca - Colombia. Rev Iberoam Micol. 2005; 22:93-8.
Cómo citar
1.
Firacative C, Torres G, Rodríguez MC, Escandón P. Primer aislamiento ambiental de Cryptococcus gattii de serotipo B, en Cúcuta, Colombia. biomedica [Internet]. 16 de abril de 2011 [citado 18 de abril de 2024];31(1):118-23. Disponible en: https://revistabiomedica.org/index.php/biomedica/article/view/342
Algunos artículos similares:
- Elizabeth Borrero, Gabriel Carrasquilla, Neal Alexander, Descentralización y reforma: ¿cuál es su impacto sobre la incidencia de malaria en los municipios colombianos? , Biomédica: Vol. 32 (2012): Suplemento 1, Malaria
- Raúl Murillo, Ricardo Cendales, Carolina Wiesner, Marion Piñeros, Sandra Tovar, Efectividad de la citología cérvico-uterina para la detección temprana de cáncer de cuello uterino en el marco del sistema de salud de Colombia , Biomédica: Vol. 29 Núm. 3 (2009)
- Sandra Lorena Girón, Julio César Mateus, Fabián Méndez, Impacto de un botadero a cielo abierto en el desarrollo de síntomas respiratorios y en costos familiares de atención en salud de niños entre 1 y 5 años en Cali, Colombia , Biomédica: Vol. 29 Núm. 3 (2009)
- José Joaquín Carvajal, Ligia Inés Moncada, Mauricio Humberto Rodríguez, Ligia del Pilar Pérez, Víctor Alberto Olano, Caracterización preliminar de los sitios de cría de Aedes (Stegomyia) albopictus (Skuse, 1894) (Diptera: Culicidae) en el municipio de Leticia, Amazonas, Colombia , Biomédica: Vol. 29 Núm. 3 (2009)
- Andrés Páez, Gloria Rey, Carlos Agudelo, Alvaro Dulce, Edgar Parra, Hernando Díaz-Granados, Damaris Heredia, Luis Polo, Brote de rabia urbana transmitida por perros en el distrito de Santa Marta, Colombia, 2006-2008 , Biomédica: Vol. 29 Núm. 3 (2009)
- Patricia Escobar, Katherine Paola Luna, Indira Paola Hernández, César Mauricio Rueda, María Magdalena Zorro, Simon L. Croft, Susceptibilidad in vitro a hexadecilfosfocolina (miltefosina), nifurtimox y benznidazole de cepas de Trypanosoma cruzi aisladas en Santander, Colombia , Biomédica: Vol. 29 Núm. 3 (2009)
- Gustavo Pradilla, Julio César Mantilla, Reynaldo Badillo, Encefalitis rábica humana por mordedura de murciélago en un área urbana de Colombia , Biomédica: Vol. 29 Núm. 2 (2009)
- Mauricio Beltrán, María Cristina Navas, María Patricia Arbeláez, Jorge Donado, Sergio Jaramillo, Fernando De la Hoz, Cecilia Estrada, Lucía del Pilar Cortés, Amalia de Maldonado, Gloria Rey, Seroprevalencia de infección por virus de la hepatitis B y por virus de la inmunodeficiencia humana en una población de pacientes con múltiples transfusiones en cuatro hospitales, Colombia, Sur América , Biomédica: Vol. 29 Núm. 2 (2009)
- Rosa Magdalena Uscátegui, Adriana M. Correa, Jaime Carmona-Fonseca, Cambios en las concentraciones de retinol, hemoglobina y ferritina en niños palúdicos colombianos , Biomédica: Vol. 29 Núm. 2 (2009)
- Claudia M.E. Romero-Vivas, Luis Eduardo Castro, Lila Visbal, Ana María Santos, Esther Díaz, Miasis cutánea por Cochliomyia hominivorax (Coquerel) (Díptera: Calliphoridae) en el Hospital Universidad del Norte, Soledad, Atlántico , Biomédica: Vol. 29 Núm. 1 (2009)
Número
Sección
Comunicación breve
| Estadísticas de artículo | |
|---|---|
| Vistas de resúmenes | |
| Vistas de PDF | |
| Descargas de PDF | |
| Vistas de HTML | |
| Otras vistas | |
