Diversidad genética de poblaciones de Giardia intestinalis en Colombia

Zaava Ravid, Sofía Duque, Adriana Arévalo, Rubén Santiago Nicholls, Moisés Wasserman, .

Palabras clave: técnica del ADN polimorfo amplificado aleatorio, Giardia lamblia, variación (Genética), genética de población

Resumen

Introducción. Giardia intestinalis es un parásito protozoario que causa la infección gastrointestinal conocida como giardiosis, la cual se transmite principalmente a través de la contaminación fecal-oral. Estudios genéticos de aislamientos de Giardia cultivados axénicamente han identificado dos grupos genéticos principales distribuidos en el mundo. En el presente estudio se analizaron 24 cepas nativas del parásito por medio de la técnica RAPD (ADN polimórfico amplificado aleatoriamente).
Objetivo. Determinar el nivel de polimorfismo y la complejidad de las cepas circulantes en áreas específicas de Colombia.
Materiales y métodos. Se utilizó el método RAPD debido a que permite obtener un análisis rápido, sencillo y confiable, que no requiere conocimiento previo de la genética del parásito. El análisis RAPD se realizó en cultivos continuos de aislamientos nativos recolectados en Colombia entre 1997 y 2001. Se evaluaron separadamente diversos iniciadores con el objeto de incrementar la capacidad de discriminación del método.
Resultados. De las 24 cepas incluidas en el estudio, 22 se agruparon en clusters independientes. Las cepas que provenían de la misma zona geográfica, y que fueron recolectadas aproximadamente al mismo tiempo, generalmente presentaron patrones RAPD sumamente similares pero distinguibles entre sí. Se analizaron así mismo los clones aislados de una misma cepa y fue posible diferenciarlos molecularmente.
Conclusión. Los resultados de las cepas estudiadas indicaron que éstas corresponden al genotipo A, y sugieren que consisten en una mezcla heterogénea de poblaciones strechamente relacionadas.

Descargas

La descarga de datos todavía no está disponible.
  • Zaava Ravid Laboratorio de Investigaciones Básicas en Bioquímica LIBBIQ, Departamento de Química, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional de Colombia, Bogotá D.C., Colombia.
  • Sofía Duque Laboratorio de Parasitología, Instituto Nacional de Salud, Bogotá D.C., Colombia
  • Adriana Arévalo Laboratorio de Parasitología, Instituto Nacional de Salud, Bogotá D.C., Colombia
  • Rubén Santiago Nicholls Laboratorio de Parasitología, Instituto Nacional de Salud, Bogotá D.C., Colombia
  • Moisés Wasserman Laboratorio de Investigaciones Básicas en Bioquímica LIBBIQ, Departamento de Química, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional de Colombia, Bogotá D.C., Colombia Laboratorio de Bioquímica, Instituto Nacional de Salud, Bogotá D.C., Colombia.

Referencias bibliográficas

1. Gascón J. Epidemiology, etiology and pathophysiology of traveler's diarrhea. Digestion 2006;73 (Supl. 1):102-8.
2. Monis PT, Andrews RH, Mayrhofer G, Ey PL. Genetic diversity within the morphological species Giardia intestinalis and its relationship to host origin. Infect Genet Evol 2003;3:29-38.
3. Nash T. Surface antigen variability and variation in Giardia lamblia. Parasitol Today 1992;8:229-34.
4. Mayrhofer G, Andrews RH, Ey PL, Chilton NB. Division of Giardia isolates from humans into two genetically distinct assemblages by electrophoretic analysis of enzymes encoded at 27 loci and comparison with Giardia muris. Parasitology 1995;111:11-7.
5. Adam RD. The biology of Giardia spp. Clin Microbiol Rev 2001;14:447-75.
6. Homan WL, Mank TG. Human giardiasis: genotype linked differences in clinical symptomatology. Int J Parasitol 2001;31:822-6.
7. Read C, Walters J, Robertson ID, Thompson RC. Correlation between genotype of Giardia duodenalis and diarrhoea. Int J Parasitol 2002;32:229-31.
8. Welsh J, McClelland M. Fingerprinting genomes using PCR with arbitrary primers. Nucleic Acids Res 1990;18:7213-8.
9. Williams JG, Kubelik AR, Kenneth KJ, Rafalski JA, Tingey SV. DNA polymorphisms amplified by arbitrary primers are useful as genetic markers. Nucleic Acids Res 1990;18:6531-5.
10. Guimaraes S, Sogayar MI, Franco MF. Giardia duodenalis: inter-strain variability of proteins, antigens, proteases, isoenzymes and nucleic acids. Rev Inst Med Trop Sao Paulo 1999;41:45-58.
11. Arévalo A, Duque S, Nicholls RS. Comportamiento de la infección experimental por aislamientos colombianos de Giardia duodenalis en el modelo animal del gerbo (Meriones unguiculatus). Biomédica
2005;25:305-14.
12. Diamond LS, Harlow DR, Cunnick CC. A new medium for the axenic cultivation or Entamoeba histolytica and other Entamoeba. Trans R Soc Trop Med Hyg 1978;72:431-2.
13. Keister DB. Axenic culture of Giardia lamblia en TYIS-33 medium supplemented with bile. Trans R Soc Trop Med Hyg 1983;77:487-8.
14. Rojas MO, De Castro J, Mariño G, Wasserman M. Detection of genomic polymorphism in Plasmodium falciparum using an arbitrarily primed PCR assay. J Eukaryot Microbiol 1996;43:323-6.
15. Deng MQ, Cliver DO. Rapid DNA extraction methods and new primers for randomly amplified polymorphic DNA analysis of Giardia duodenalis. J Microbiol Methods 1999;37:193-200.
16. Armstrong JS, Gibbs AJ, Peakall R, Weiller G. The RAPDistance Package. 1994. [Consultado: noviembre de 2001]. Disponible en: http://www.rsbs.anu.edu.au/Products&Services/BiotechnologyTransferUnit/rapdistance.asp
17. Nei M, Li WH. Mathematical model for studying genetic variation in terms of restriction endonucleases. Proc Natl Acad Sci USA 1979;76:5269-73.
18. Saitou N, Nei M. The neighbor-joining method: a new method for reconstructing phylogenetic trees. Mol Biol Evol 1987;4:406-25.
19. Gillin FD, Diamond LS. Clonal growth of Giardia lamblia trophozoites in a semisolid agarose medium. J Parasitol 1980;66:350-2.
20. Andrews RH, Chilton NB, Mayrhofer G. Selection of specific genotypes of Giardia intestinalis by growth in vitro and in vivo. Parasitology 1992;105:375-86.
21. Tibayrenc M, Kjellberg F, Ayala FJ. A clonal theory of parasitic protozoa: the population structures of Entamoeba, Giardia, Leishmania, Naegleria, Plasmodium, Trichomonas and Trypanosoma and their medical and taxonomical consequences. Proc Natl Acad Sci USA 1990;87:2414-8.
22. Tibayrenc M, Ayala FJ. The clonal theory of parasitic protozoa: 12 years on. Trends Parasitol 2002;18:405-10.
23. Le Blancq SM, Korman SH, Van der Ploeg LH. Frequent rearrangements of rRNA-encoding chromosomes in Giardia lamblia. Nucl Acid Res 1991;19:4405-12.
24. Hou G, Le Blancq SM, E Y, Zhu H, Lee MG. Structure of a frequently rearranged rRNA-encoding chromosome in Giardia lamblia. Nucl Acid Res 1995;23:3310-7.
25. Meloni BB, Lymbery AJ, Thompson RC. Genetic characterization of isolates of Giardia duodenalis by enzyme electrophoresis: implications for reproductive biology, population structure, taxonomy and epidemiology. J Parasitol 1995;81:368-83.
Cómo citar
Ravid, Z., Duque, S., Arévalo, A., Nicholls, R. S., & Wasserman, M. (2007). Diversidad genética de poblaciones de Giardia intestinalis en Colombia. Biomédica, 27(1), 34-41. https://doi.org/10.7705/biomedica.v27i1.231
Publicado
2007-03-01
Sección
Artículos originales