Discriminación por morfometría geométrica de once especies de Anopheles (Nyssorhynchus) presentes en Colombia
Resumen
Introducción. Es importante determinar las especies de Anopheles pertenecientes al subgénero Nyssorhynchus, dado que allí se encuentran los vectores principales de malaria en Colombia. Objetivo. Utilizar la morfometría geométrica para evaluar la variación morfométrica de once especies del subgénero Nyssorhynchus, presentes en Colombia y la capacidad de diferenciar las hembras.Materiales y métodos. Los especímenes fueron obtenidos de mosquitos silvestres, series e isofamilias de hembras recolectadas en cebos humanos protegidos y fueron identificados en todos sus estadios asociados usando las claves convencionales. A partir de fotografías digitales del ala derecha de 336 ejemplares de las 11 especies se seleccionaron 12 puntos anatómicos. Los puntos se convirtieron en coordenadas, las cuales se procesaron mediante el análisis generalizado de Procrustes. Se obtuvieron variables de tamaño y conformación, las cuales fueron analizadas mediante estadísticas univariadas y multivariadas.
Resultados. Las técnicas de morfometría geométrica demuestran que la división en secciones del subgénero Nyssorrhynchus no se correlaciona con la conformación de las alas y demostraron que sólo con 12 puntos anatómicos se logra diferenciar en sus respectivas especies el 97% de los especímenes de la sección Argyritarsis y el 86% de la sección Albimanus del subgénero Nyssorhynchus, de forma cuantitativa y sin ambigüedades. Además, se separaron los individuos de tres especies que habitan en simpatría en el Putumayo, difíciles de discriminar en el estadio de adulto hembra.
Conclusión. La mayoría de especies de Anopheles (Nyssorhynchus) presentes en Colombia se pueden diferenciar al utilizar la morfometría geométrica como herramienta de apoyo a las claves convencionales
Descargas
Referencias bibliográficas
1. World Health Organization. Malaria. Fact Sheet Nº 94. Geneve: WHO; 2007. Consultado: marzo de 2008. Disponible en: http://www.who.int/mediacentre/factsheets/fs094/en/index.html.
2. Olano VA, Brochero LH, Saenz R, Quiñones ML, Molina JA. Mapas preliminares de la distribución de especies de Anopheles vectores de malaria en Colombia. Biomédica. 2001;21:402-8.
3. Quiñones ML, Ruiz F, Calle DA, Harbach RE, Erazo HF, Linton YM. Incrimination of Anopheles (Nyssorhynchus) rangeli and An. (Nys.) oswaldoi as natural vectors of Plasmodium vivax in Southern Colombia. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2006;101:617-23.
4. Faran ME. Mosquito studies (Diptera: Culicidae). XXXIV. A revisions of the Albimanus Section of the subgenus Nyssorhynchus of Anopheles. Contrib Am Entomol Inst. 1980;15:1-215.
5. Faran ME, Linthicum KJ. A Handbook of the species of Anopheles (Nyssorhynchus) (Diptera: Culicidae). Mosq Syst. 1981;13:1-81.
6. Linthicum KJ. A revision of the Argyritarsis Section of the subgenus Nyssorhynchus of Anopheles (Diptera: Culicidae). Mosq Syst. 1988;20:99-271.
7. Suárez MF, Quiñones M, Fleming GA, Robayo M. Guía introductoria a la morfología de Anopheles y clave para determinación de las principales especies de Colombia. Bogotá, D.C.: Ministerio de Salud; 1988.
8. Quiñones ML, Harbach RE, Calle DA, Ruiz F, Erazo HF. Variante morfológica de Anopheles benarrochi (Diptera: Culicidae) en Putumayo, Colombia. Biomédica. 2001;21:351-9.
9. Frizzi G. Salivary gland chromosomes of Anopheles. Nature. 1947;160:226-8.
10. Frizzi G. Etude cytogenetique d´ Anopheles maculipennis en Italie. Bull World Health Organ. 1953;9:335-44.
11. Miles SJ. A biochemical key to adult members of the Anopheles gambiae group of species (Diptera: Culicidae). J Med Entomol. 1979;15:297-9.
12. Foley DH, Bryan JH. Electrophoretic keys to identify members of the Anopheles punctulatus complex of vector mosquitoes in Papua New Guinea. Med Vet Entomol. 1993;7:49-53.
13. Wilkerson RC, Parsons TJ, Klein TA, Gaffigan TV, Bergo E, Consolim J. Diagnosis by random amplified polymorphic DNA polymerase chain reaction of four cryptic species related to Anopheles albitarsis from Paraguay, Argentina and Brazil. J Med Entomol. 1995; 32:697-704.
14. Marelli MT, Malafronte RS, Florez-Mendoza C, Lourenco- de- Oliveira R, Kloetzel JK, Marinotti O. Sequence analysis of the second internal transcribed spacer of ribosomal DNA in Anopheles oswaldoi (Diptera: Culicidae). J Med Entomol. 1999;36:679-84.
15. Rohlf FJ, Marcus LF. A revolution in morphometrics. Trends Ecol Evol. 1993;8:129-32.
16. Matias A, De la Riva JX, Torrez M, Dujardin JP. Rhodnius robustus in Bolivia identified by its wings. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2001;96:947-50.
17. Villegas J, Feliciangeli MD, Dujardin JP. Wing shape divergence between Rhodnius prolixus from Cojedes (Venezuela) and Rhodnius robustus from Mérida (Venezuela). Infect Genet Evol. 2002;2:121-8.
18. Gumiel L, Catala S, Noireau F, Rojas de Arias A, Garcia A, Dujardin JP. Wing geometry in Triatoma infestans (Klug) and T. melanosoma Martinez, Olmedo & Carcavallo (Hemiptera:Reduvidae). Syst Entomol 2003;28:173-9.
19. Dujardin JP. MOGwin (Software for Generalized Procrustes Analysis). Institut de Recherches pour le Développement. 2004. Consultado: marzo de 2008. Disponible en: http://www.mpl.ird.fr/morphometrics/mog/index.html
20. Dujardin JP. PADwin (Software for Discriminant Analysis). Institut de Recherches pour le Développement. 2004. Consultado: marzo de 2008. Disponible en: http://www.mpl.ird.fr/morphometrics/pad/
21. Calle DA, Quiñones ML, Erazo H, Jaramillo O. Morphometric discrimination of females of five species of Anopheles of the subgenus Nyssorhynchus from Southern and Northwest Colombia. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2002;97:1191-5.
22. Delgado N, Rubio-Palis Y. Identification of Anopheles (Nyssorhynchus) (Diptera: Culicidae) occurring in Western Venezuela. Mosq Syst. 1993;25:222-30.
23. Rubio-Palis Y. Caracterización morfométrica de poblaciones de Anopheles (Nyssorhynchus) darlingi del sur de Venezuela. Bol Entomol Venez. 1998;13: 141-72.
24. Rubio-Palis Y. Anopheles (Nyssorhynchus) de Venezuela: taxonomía, bionomía, ecología e importancia médica. Maracay: Escuela de Malariología y Saneamiento Ambiental; 2000. p. 120.
25. Jirakanjanakit N, Dujardin JP. Discrimination of Aedes aegypti (Diptera: Culicidae) laboratory lines based on wing geometry. Southeast Asian J Trop Med Public Health. 2005;36:858-61.
26. Jirakanjanakit N, Leemingsawat S, Thongrungkiat S, Apiwathnasor C, Singhaniyom S, Bellec C, et al. Influence of larval density or food variation on the geometry of the wing of Aedes (Stegomyia) aegypti. Trop Med Int Health. 2007;12:1354-60.
27. Ruiz F, Quiñones ML, Erazo H, Calle DA, Alzate FA, Linton YM. Molecular differentiation of Anopheles (Nyssorhynchus) benarrochi and A. (N.) oswaldoi from Southern Colombia. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2005;100:155-60.
28. Rohlf J. tpsDig, version 1.04. Stony Brook, NY: Department of Ecology and Evolution, State University of New York at Stony Brook; 2004. Consultado: marzo de 2008. Disponible en: http://life.bio.sunysb.edu/morph.
29. Rohlf FJ, Slice DE. Extensions of the Procrustes method for the optimal superimposition of landmarks. Syst Zool. 1990;39:40-59.
30. Bookstein FL. Morphometrics tools for landmark data: Geometry and biology. Cambridge: Cambridge University Press; 1991.p.435.
31. Rohlf J. tpsRelw, version 1.39. Stony Brook, NY: Department of Ecology and Evolution, State University of New York at Stony Brook; 2004. Consultado: marzo de 2008. Disponible en: http://life.bio.sunysb.edu/morph.
32. SAS Institute Inc. JMP® Statistisc and Graphics Guide, version 3.1. Cary, NC: SAS Institute Inc; 1999.p.592.
33. Landis JR, Koch GG. The measurement of observer agreement for categorical data. Biometrics. 1977;33:159-74.
34. Rohlf, J. tpsRegr, version 1.28. Stony Brook, NY: Department of Ecology and Evolution, State University of New York at Stony Brook; 2003. Consultado: marzo de 2008. Disponible en: http://life.bio.sunysb.edu/morph.
35. Sallum M, Schultz T, Foster P, Arostein K, Wirtz R, Wilkerson C. Phylogeny of Anophelinae (Diptera: Culicidae) based of nuclear, ribosomal and mitochondrial DNA secuences. Syst Entomol. 2002; 27:361-82.
36. dos Santos JM, Maia J de F, Tadei WP, Rodríguez GA. Isoenzymatic Variability among five Anopheles species belonging to the Nyssorhynchus and Anopheles subgenera of the Amazon region, Brazil. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2003;98:247-53.
37. Sallum MA, Bergo ES, Flores DC, Forattini OP. Systematic Studies on Anopheles galvaoi Causey, Deane & Deane from the Subgenus Nysssorhynchus Blanchard (Diptera: Culicidae). Mem Inst Oswaldo Cruz. 2000;97:1177-89.
38. Gonzales R, Carrejo N. Introducción al estudio taxonómico de Anopheles de Colombia Claves y notas de distribución. Cali: Editorial Litocencoa; 2007. p. 237.
Algunos artículos similares:
- Elizabeth Borrero, Gabriel Carrasquilla, Neal Alexander, Descentralización y reforma: ¿cuál es su impacto sobre la incidencia de malaria en los municipios colombianos? , Biomédica: Vol. 32 (2012): Suplemento 1, Malaria
- Carolina Montoya, Priscila Bascuñán, Julián Rodríguez-Zabala, Margarita M. Correa, Abundancia, composición e infección natural de mosquitos Anopheles en dos regiones endémicas para malaria en Colombia , Biomédica: Vol. 37 Núm. Sup. 2 (2017): Suplemento 2, Entomología médica, 2017
- Pilar Jiménez, Jan E. Conn, Robert Wirtz, Helena Brochero, Anopheles (Díptera: Culicidae) vectores de malaria en el municipio de Puerto Carreño, Vichada, Colombia , Biomédica: Vol. 32 (2012): Suplemento 1, Malaria
- Ronald Maestre, Consuelo Vergara Sanchez, Guillermo Berrueco Rodríguez, Betsy Bello Novoa, Helena Brochero, Presencia de Haemagogus equinus Theobald, 1903 (Diptera: Culicidae) en los municipios de Soledad y Malambo en el departamento del Atlántico, Colombia, 1998-2005 , Biomédica: Vol. 28 Núm. 1 (2008)
- José Joaquín Carvajal, Ligia Inés Moncada, Mauricio Humberto Rodríguez, Ligia del Pilar Pérez, Víctor Alberto Olano, Caracterización preliminar de los sitios de cría de Aedes (Stegomyia) albopictus (Skuse, 1894) (Diptera: Culicidae) en el municipio de Leticia, Amazonas, Colombia , Biomédica: Vol. 29 Núm. 3 (2009)
- Eduar Elías Bejarano, Patricia Duque, Iván Darío Vélez, Redescripción de la hembra de Lutzomyia vattierae (Diptera: Psychodidae, Phlebotominae) de la serranía de La Macarena, Colombia , Biomédica: Vol. 26 Núm. 4 (2006)
- Víctor Manuel Angulo, Lyda Esteban, Nueva trampa para la captura de triatominos en hábitats silvestres y peridomésticos , Biomédica: Vol. 31 Núm. 2 (2011)
- María Elena Cuéllar-Jiménez, Olga Lucía Velásquez-Escobar, Ranulfo González-Obando, Carlos Andrés Morales-Reichmann, Detección de Aedes albopictus (Skuse) (Diptera: Culicidae) en la ciudad de Cali, Valle del Cauca, Colombia , Biomédica: Vol. 27 Núm. 2 (2007)
- Rosa Magdalena Uscátegui, Adriana M. Correa, Jaime Carmona-Fonseca, Cambios en las concentraciones de retinol, hemoglobina y ferritina en niños palúdicos colombianos , Biomédica: Vol. 29 Núm. 2 (2009)
- Larry Niño, Uso de la función semivariograma y estimación kriging en el análisis espacial de un indicador entomológico de Aedes aegypti (Diptera: Culicidae) , Biomédica: Vol. 28 Núm. 4 (2008)
Estadísticas de artículo | |
---|---|
Vistas de resúmenes | |
Vistas de PDF | |
Descargas de PDF | |
Vistas de HTML | |
Otras vistas |