Determinación in vitro de la pareja sexual en aislamientos del complejo Cryptococcus neoformans

Patricia Escandón, Popchai Ngamskulrungroj, Wieland Meyer, Elizabeth Castañeda, .

Palabras clave: Cryptococcus neoformans, fenotipo, in vitro, genes, hongos

Resumen

Introducción. En el complejo Cryptococcus neoformans se reconocen dos especies y cinco serotipos: C. neoformans (var. grubii, serotipo A; var. neoformans, serotipo D y un híbrido, serotipo AD) y C. gattii (serotipos B y C). La pareja sexual a y a es controlada por un solo locus, y la pareja sexual a es la más prevalente en los serotipos A y D, y es convencionalmente determinada mediante reacción en cadena de la polimerasa.
Objetivo. Evaluar la habilidad de aislamientos colombianos de C. neoformans para aparearse in vitro con aislamientos control de la pareja sexual opuesta.
Materiales y métodos. Treinta y tres aislamientos clínicos de C. neoformans var. grubii serotipo A, 4 de la var. neoformans serotipo D, todos pareja sexual a, y 16 aislamientos clínicos de C. gattii, 13 serotipo B (pareja sexual a) y 3 serotipo C (pareja sexual a ), se mezclaron, en agar jugo V8 modificado, con cepas control para determinar la pareja sexual in vitro.
Resultados. Los estudios de apareamiento mostraron que 9 de 33 (27,3%) aislamientos serotipo A y 6 de 13 (46,2%) aislamientos serotipo B tuvieron la capacidad de aparearse con las cepas control. Todos los aislamientos del serotipo A que presentaron apareamiento eran pareja sexual a y los del serotipo B eran pareja sexual a. Microscópicamente se observaron conexiones en gancho, basidias y basidiosporas, estructuras que establecieron que se había realizado el proceso de apareamiento.
Conclusión. Este acercamiento provee por primera vez la capacidad de que los aislamientos colombianos de C. neoformans se apareen in vitro con cepas control lo cual tiene importancia en el estudio de la diseminación del hongo.

Descargas

La descarga de datos todavía no está disponible.
  • Patricia Escandón Grupo de Microbiología, Instituto Nacional de Salud, Bogotá, D. C., Colombia
  • Popchai Ngamskulrungroj Molecular Mycology Research Laboratory, Center for Infectious Diseases and Microbiology, The University of Sydney Western Clinical School at Westmead Hospital/Westmead Millennium Institute, Westmead, NSW, Australia
  • Wieland Meyer Molecular Mycology Research Laboratory, Center for Infectious Diseases and Microbiology, The University of Sydney Western Clinical School at Westmead Hospital/Westmead Millennium Institute, Westmead, NSW, Australia
  • Elizabeth Castañeda Grupo de Microbiología, Instituto Nacional de Salud, Bogotá, D. C., Colombia

Referencias

1. Casadevall A, Perfect JR. Cryptococcus neoformans. Washington, D.C.: American Society for Microbiology Press; 1998. p.541.
2. Franzot SP, Salkin IF, Casadevall A. Cryptococcus neoformans var. grubii: a separate varietal status for Cryptococcus neoformans serotype A isolates. J Clin Microbiol. 1999;37:838-40.
3. Boekhout T, Theelen B, Diaz M, Fell JW, Hop WC, Abeln EC, et al. Hybrid genotypes in the pathogenic yeast Cryptococcus neoformans. Microbiology. 2001;147:891-907.
4. Meyer W, Marszewska K, Amirmostofian M, Igreja RP, Hardke C, Methling K, et al. Molecular typing of global isolates of Cryptococcus neoformans var. neoformans by polymerase chain reaction fingerprinting and randomly amplified polymorphic DNA- a pilot study to standardize techniques on which to base a detailed epidemiological survey. Electrophoresis. 1999;20:1790-9.
5. Kwon-Chung K, Boekhout T, Fell J, Diaz M. Proposal to conserve the name Cryptococcus gattii against C. hondurianus and C. bacillisporus (Basidiomycota, Hymenomycetes, Tremellomycetidae). Taxon. 2002;51:804-6.
6. Bovers M, Hagen F, Kuramae EE, Diaz MR, Spanjaard L, Dromer F, et al. Unique hybrids between the fungal pathogens Cryptococcus neoformans and Cryptococcus gattii. FEMS Yeast Res. 2006;6:599-607.
7. Ellis DH, Pfeiffer TJ. Natural habitat of Cryptococcus neoformans var. gattii. J Clin Microbiol. 1990;28:1642-4.
8. Sorrell TC, Ellis DH. Ecology of Cryptococcus neoformans. Rev Iberoam Micol. 1997;14:42-3.
9. Meyer W, Castañeda A, Jackson S, Huynh M, Castañeda E, Iberoamerican Cryptococcal Study Group. Molecular typing of Iberoamerican Cryptococcus neoformans isolates. Emerg Infect Dis. 2003;9:189-95.
10. Stephen C, Lester S, Black W, Fyfe M, Raverty S. Multispecies outbreak of cryptococcosis on southern Vancouver Island, British Columbia. Can Vet J. 2002;43:792-4.
11. Idnurm A, Bahn YS, Nielsen K, Lin X, Fraser JA, Heitman J. Deciphering the model pathogenic fungus Cryptococcus neoformans. Nat Rev Microbiol. 2005;3:753-64.
12. Kwon-Chung KJ. Morphogenesis of Filobasidiella neoformans, the sexual state of Cryptococcus neoformans. Mycologia. 1976;68:821-33.
13. Kwon-Chung KJ, Edman JC, Wickes BL. Genetic association of mating types and virulence in Cryptococcus neoformans. Infect Immun. 1992;60:602-5.
14. Kidd SE, Hagen F, Tscharke LR, Huynh M, Bartlett KH, Fyfe M, et al. A rare genotype of Cryptococcus gattii caused the cryptococcosis outbreak on Vancouver Island (British Columbia, Canada). Proc Natl Acad Sci USA. 2004;101:17258-63.
15. Fraser JA, Giles SS, Wenink EC, Geunes-Boyer SG, Wright JR, Diezmann S et al. Same sex mating and the origin of the Vancouver Island Cryptococcus gattii outbreak. Nature. 2005;437:1360-4.
16. Halliday CL, Bui T, Krockenberger M, Malik R, Ellis DH, Carter DA. Presence of a and a mating types in environmental and clinical collections of Cryptococcus neoformans var. gattii strains from Australia. J Clin Microbiol. 1999;37:2920-6.
17. Escandón P, Sánchez A, Martínez M, Meyer W, Castañeda E. Molecular epidemiology of clinical and environmental isolates of the Cryptococcus neoformans species complex reveals a high genetic diversity and the presence of the molecular type VGII mating type a in Colombia. FEMS Yeast Res. 2006;6:625-35.
18. Fraser JA, Subaran RL, Nichols CB, Heitman J. Recapitulation of the sexual cycle of the primary fungal pathogen Cryptococcus neoformans var. gattii: implications for an outbreak on Vancouver Island, Canada. Eukaryot Cell 2003;2:1036-45.
19. Kwon-Chung KJ. A new species of Filobasidiella, the sexual state of Cryptococcus neoformans B and C serotypes. Mycologia. 1976;68:942-6.
20. Wickes BL, Mayorga ME, Edman U, Edman JC. Dimorphism and haploid fruiting in Cryptococcus neoformans: association with the a mating type. Proc Natl Acad Sci USA. 1996;93:7327-31.
21. Halliday CL, Carter DA. Clonal reproduction and limited dispersal in an environmental population of Cryptococcus neoformans var. gattii isolates from Australia. J Clin Microbiol. 2003;41:703-11.
22. Kwon-Chung KJ, Bennett JE, Rhodes JC. Taxonomic studies on Filobasidiella species and their anamorphs. Antonie Van Leeuwenhoek. 1982;48:25-38.
23. Ordóñez N, Castañeda E. Serotipificación de aislamientos clínicos y del medio ambiente de Cryptococcus neoformans en Colombia. Biomédica. 1994;14:131-9.
24. Viviani MA, Esposto MC, Cogliati M, Montagna MT, Wickes BL. Isolation of a Cryptococcus neoformans serotype A MATa strain from the Italian environment. Med Mycol. 2001;41:383-6.
Cómo citar
Escandón, P., Ngamskulrungroj, P., Meyer, W., & Castañeda, E. (1). Determinación in vitro de la pareja sexual en aislamientos del complejo Cryptococcus neoformans. Biomédica, 27(2), 308-14. https://doi.org/10.7705/biomedica.v27i2.227
Sección
Nota técnica