Evaluación de dos pruebas rápidas [NOW® ICT Malaria Pf/Pv y OptiMAL®] para el diagnóstico de paludismo en Tumaco, Colombia
Palabras clave:
malaria/diagnóstico, sensibilidad y especificidad, parasitemia, Plasmodium vivax, Plasmodium falciparum, Colombia
Resumen
Introducción. El Instituto Nacional de Salud con el fin de mejorar el acceso al diagnóstico de paludismo, evaluó dos pruebas rápidas para el diagnóstico de dicha enfermedad.Objetivo. Evaluar la sensibilidad, especificidad y concordancia de dos pruebas inmunocromatográficas, NOW® ICT Malaria Pf/Pv y OptiMAL®, frente a la gota gruesa.
Materiales y métodos. Se llevó a cabo un estudio descriptivo de concordancia en 214 pacientes de Tumaco, captados mediante búsqueda pasiva y brigadas de atención, que presentaran, por lo menos, uno de los síntomas de la tríada clásica.
Resultados. NOW® ICT tuvo una sensibilidad general de 98,4% (intervalo de confianza de 95% (IC95%): 90,3-99,9), especificidad general de 98,0% (IC95%: 93,9-99,5). Para Plasmodium falciparum la sensibilidad fue de 98,2% (IC95%: 89,4-99,9) especificidad de 98,1% (IC95%:94,1-99,5). Esta sensibilidad disminuyó a 80% en el rango de 200-4.000 parásitos/μl. Los valores de sensibilidad y especificidad de NOW® ICT para Plasmodium vivax fueron del 100% y no se afectó la sensibilidad en los rangos de parasitemias establecidos. OptiMAL® tuvo una sensibilidad general de 95,2% (IC95%: 85,8-98,8) y especificidad general de 99,3% (IC95%: 95,8-100,0). Para P. falciparum OptiMAL® tuvo una sensibilidad de 94,7% (IC95%: 84,5-98,6) y especificidad de 99,4% (IC95%: 96,0-100,0). La sensibilidad disminuyó a 60% en el rango de de 200-4.000 parásitos/μl. La sensibilidad de OptiMAL® para P. vivax fue 66,7% (IC95%: 24,1-94,0), pero disminuyó a 50% en el rango de 300-2.500 parásitos/μl.
Conclusiones. Se obtuvieron buenos resultados en la sensibilidad y la especificidad para ambas pruebas, pero superiores para NOW® ICT.
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Referencias bibliográficas
1. Mendoza NM, Montoya R, García M, Padilla JC, Bruzón LO, Mendoza E, et al. Evaluación de campo de una prueba rápida para el diagnóstico de malaria. Biomédica. 2001;21:313-9.
2. Ministerio de Salud. Informe ejecutivo semanal. Malaria en Córdoba: situación epidemiológica y medidas de intervención, Colombia. Inf Quinc Epidemiol Nal. 2001;6:49-64.
3. World Heath Organization. Malaria diagnosis. New perspectives. WHO/MAL/200.1091. Geneva: WHO; 2000.
4. Mason DP, Wongsrichanalai Lin K, Miller RS, Kawamoto F. The panmalarial antigen detected by the ICT malaria Pf/Pv immunochromatography test is expressed by Plasmodium malariae. J Clin Microbiol.
2001;39:2035.
5. Win TT, Tantular IS, Pusarawati S, Kerong H, Lin K, Matsuoka H, et al. Detection of Plasmodium ovale by ICT malaria P.f/P.v. immunochromatographic test. Acta Trop. 2001;80:283-4.
6. Tjitra E, Suprianto S, Dyer M, Currie BJ, Anstey NM. Field evaluation of the ICT Malaria P.f/P.v immunochromatographic test for detection of Plasmodium falciparum and Plasmodium vivax in
patients with a presumptive clinical diagnosis of malaria in eastern Indonesia. J Clin Microbiol. 1999;37:2412-7.
7. García C, Moreno L, García H. Evaluación de pruebas diagnósticas. En: Moreno L, Cano F, García H, editores. Epidemiología clínica. 3a ed. Atlampa: Editorial Interamericana S.A; 1994.
8. Ministerio de Salud del Perú/Instituto Nacional de Salud del Perú. Evaluación de una prueba rápida inmunocromatográfica por promotores de salud para el diagnóstico de malaria en áreas rurales de la Amazonía peruana, 1999. Informe técnico. Lima: Ministerio de Salud del Perú/Instituto Nacional de Salud del Perú: 1999.
9. Ferro BE, Gonzalez IJ, Carvajal F, Palma GI, Saravia NG. Performance of OptiMAL ® in the diagnosis of Plasmodium vivax and Plasmodium falciparum infections in a malaria referral center in Colombia. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2002;97:731-5.
10. van den Broek I, Hill O, Gordillo F, Angarita B, Hamade P, Counihan H, et al. Evaluation of three rapid tests for diagnosis of P. falciparum and P. vivax malaria in Colombia. Am J Trop Med Hyg. 2006;75: 1209-15.
11. Wongsrichanalai C, Arevalo I, Laoboonchai A, Yingyuen K, Miller RS, Magill AJ, et al. Rapid diagnostic devices for malaria: field evaluation of a new prototype immunochromatographic assay for the
detection of Plasmodium falciparum and non-falciparum Plasmodium. Am J Trop Med Hyg. 2003;69:26-30.
12. Fernando SD, Karunaweera ND, Fernando WP. Evaluation of a rapid whole blood immunochromatographic assay for the diagnosis of Plasmodium falciparum and Plasmodium vivax malaria. Ceylon Med J. 2004;49:7-11.
13. Playford EG, Walter J. Evaluation of the ICT malaria Pf/Pv and the OptiMal rapid diagnostic tests for malaria in febrile returned travellers. J Clin Microbiol. 2002;40:4166-71.
14. Londoño B, Camona J, Blair S. Comparación de los métodos Optimal® y gota gruesa para el diagnóstico de malaria en una zona endémica sin epidemia. Biomédica. 2002;21:466-75.
15. Singh N, Saxena A, Valecha N. Field evaluation of the ICT malaria Pf/Pv immunochromatographic test for diagnosis of Plasmodium falciparum and P. vivax infection in forest villages of Chhindwara, central India. Trop Med Int Health. 2000;5:765-70.
16. Cooke AH, Chiodini PL, Doherty T, Moody AH, Ries J, Pinder M. Comparison of a parasite lactate dehydrogenase-based immunochromatographic antigen detection assay (OptiMAL®) with microscopy
for the detection of malaria parasites in human blood samples. Am J Trop Med Hyg. 1999;60:173-6.
17. Soto Tarazona A, Solari Zerpa L, Mendoza Requena D, Llanos-Cuentas A, Magill A. Evaluation of the rapid diagnosis test Optimal for diagnosis of malaria due to Plasmodium vivax. Braz J Infect Dis. 2004,8:151-5.
18. Pabón A, Álvarez G, Yánez J, Céspedes C, Rodríguez Y, Restrepo A, et al. Evaluación de la prueba rápida inmunocromatográfica Binax NOW® ICT Pf/Pv para el diagnóstico de paludismo en un área
endémica de Colombia. Biomédica. 2007;27:225-35.
19. Makler MT, Palmer CJ, Age AL. A review of practical techniques for the diagnosis of malaria. Ann Trop Med Parasitol. 1998;92:419-33.
20. World Health Organization. Malaria rapid diagnosis. Making it work. RS/2003/GE/05(PHL). Geneva: WHO; 2003.
2. Ministerio de Salud. Informe ejecutivo semanal. Malaria en Córdoba: situación epidemiológica y medidas de intervención, Colombia. Inf Quinc Epidemiol Nal. 2001;6:49-64.
3. World Heath Organization. Malaria diagnosis. New perspectives. WHO/MAL/200.1091. Geneva: WHO; 2000.
4. Mason DP, Wongsrichanalai Lin K, Miller RS, Kawamoto F. The panmalarial antigen detected by the ICT malaria Pf/Pv immunochromatography test is expressed by Plasmodium malariae. J Clin Microbiol.
2001;39:2035.
5. Win TT, Tantular IS, Pusarawati S, Kerong H, Lin K, Matsuoka H, et al. Detection of Plasmodium ovale by ICT malaria P.f/P.v. immunochromatographic test. Acta Trop. 2001;80:283-4.
6. Tjitra E, Suprianto S, Dyer M, Currie BJ, Anstey NM. Field evaluation of the ICT Malaria P.f/P.v immunochromatographic test for detection of Plasmodium falciparum and Plasmodium vivax in
patients with a presumptive clinical diagnosis of malaria in eastern Indonesia. J Clin Microbiol. 1999;37:2412-7.
7. García C, Moreno L, García H. Evaluación de pruebas diagnósticas. En: Moreno L, Cano F, García H, editores. Epidemiología clínica. 3a ed. Atlampa: Editorial Interamericana S.A; 1994.
8. Ministerio de Salud del Perú/Instituto Nacional de Salud del Perú. Evaluación de una prueba rápida inmunocromatográfica por promotores de salud para el diagnóstico de malaria en áreas rurales de la Amazonía peruana, 1999. Informe técnico. Lima: Ministerio de Salud del Perú/Instituto Nacional de Salud del Perú: 1999.
9. Ferro BE, Gonzalez IJ, Carvajal F, Palma GI, Saravia NG. Performance of OptiMAL ® in the diagnosis of Plasmodium vivax and Plasmodium falciparum infections in a malaria referral center in Colombia. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2002;97:731-5.
10. van den Broek I, Hill O, Gordillo F, Angarita B, Hamade P, Counihan H, et al. Evaluation of three rapid tests for diagnosis of P. falciparum and P. vivax malaria in Colombia. Am J Trop Med Hyg. 2006;75: 1209-15.
11. Wongsrichanalai C, Arevalo I, Laoboonchai A, Yingyuen K, Miller RS, Magill AJ, et al. Rapid diagnostic devices for malaria: field evaluation of a new prototype immunochromatographic assay for the
detection of Plasmodium falciparum and non-falciparum Plasmodium. Am J Trop Med Hyg. 2003;69:26-30.
12. Fernando SD, Karunaweera ND, Fernando WP. Evaluation of a rapid whole blood immunochromatographic assay for the diagnosis of Plasmodium falciparum and Plasmodium vivax malaria. Ceylon Med J. 2004;49:7-11.
13. Playford EG, Walter J. Evaluation of the ICT malaria Pf/Pv and the OptiMal rapid diagnostic tests for malaria in febrile returned travellers. J Clin Microbiol. 2002;40:4166-71.
14. Londoño B, Camona J, Blair S. Comparación de los métodos Optimal® y gota gruesa para el diagnóstico de malaria en una zona endémica sin epidemia. Biomédica. 2002;21:466-75.
15. Singh N, Saxena A, Valecha N. Field evaluation of the ICT malaria Pf/Pv immunochromatographic test for diagnosis of Plasmodium falciparum and P. vivax infection in forest villages of Chhindwara, central India. Trop Med Int Health. 2000;5:765-70.
16. Cooke AH, Chiodini PL, Doherty T, Moody AH, Ries J, Pinder M. Comparison of a parasite lactate dehydrogenase-based immunochromatographic antigen detection assay (OptiMAL®) with microscopy
for the detection of malaria parasites in human blood samples. Am J Trop Med Hyg. 1999;60:173-6.
17. Soto Tarazona A, Solari Zerpa L, Mendoza Requena D, Llanos-Cuentas A, Magill A. Evaluation of the rapid diagnosis test Optimal for diagnosis of malaria due to Plasmodium vivax. Braz J Infect Dis. 2004,8:151-5.
18. Pabón A, Álvarez G, Yánez J, Céspedes C, Rodríguez Y, Restrepo A, et al. Evaluación de la prueba rápida inmunocromatográfica Binax NOW® ICT Pf/Pv para el diagnóstico de paludismo en un área
endémica de Colombia. Biomédica. 2007;27:225-35.
19. Makler MT, Palmer CJ, Age AL. A review of practical techniques for the diagnosis of malaria. Ann Trop Med Parasitol. 1998;92:419-33.
20. World Health Organization. Malaria rapid diagnosis. Making it work. RS/2003/GE/05(PHL). Geneva: WHO; 2003.
Cómo citar
1.
Mendoza NM, García M, Cortés LJ, Vela C, Erazo R, Pérez P, et al. Evaluación de dos pruebas rápidas [NOW® ICT Malaria Pf/Pv y OptiMAL®] para el diagnóstico de paludismo en Tumaco, Colombia. Biomed. [Internet]. 1 de diciembre de 2007 [citado 18 de agosto de 2024];27(4):571-80. Disponible en: https://revistabiomedica.org/index.php/biomedica/article/view/174
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- Liliana Jazmín Cortés, Lyda Muñoz, Martha Stella Ayala, Comparación entre metodologías para el diagnóstico microscópico de malaria , Biomédica: Vol. 38 Núm. 2 (2018)
- Johanna Ochoa, Lyda Osorio, Epidemiología de malaria urbana en Quibdó, Chocó. , Biomédica: Vol. 26 Núm. 2 (2006)
- Alberto Tobón-Castaño, John Edison Betancur, Malaria grave en mujeres gestantes hospitalizadas entre el 2010 y el 2014 en el departamento de Antioquia, Colombia , Biomédica: Vol. 39 Núm. 2 (2019)
- John Alexander Galindo, Fabio Aníbal Cristiano, Angélica Knudson, Rubén Santiago Nicholls, Ángela Patricia Guerra, Mutaciones puntuales en los genes dhfr y dhps de Plasmodium falciparum de tres regiones endémicas , Biomédica: Vol. 30 Núm. 1 (2010)
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Publicado
2007-12-01
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