Prevalencia de la resistencia a macrólidos y aminoglucósidos en los complejos Mycobacterium avium y M. abscessus y en Mycobacterium chelonae identificados en el Laboratorio Nacional de Referencia de Colombia entre el 2018 y el 2022

Claudia Llerena, Yanely Angélica Valbuena, Angie Paola Zabaleta, Angélica Nathalia García, .

Palabras clave: micobacterias no tuberculosas, infecciones por Mycobacterium, Mycobacterium avium, Mycobacterium chelonae, Mycobacterium abscessus subespecie abscessus, macrólidos, aminoglucósidos, terapéutica, diagnóstico

Resumen

Introducción. Mycobacterium chelonae y los complejos Mycobacterium avium y M. abscessus, son agentes patógenos emergentes causantes de micobacteriosis. El tratamiento de esta infección depende de la especie y la subespecie identificadas. Los fármacos de elección son los macrólidos y aminoglucósidos, contra los cuales se ha reportado resistencia; por esta razón, el determinar el perfil de sensibilidad le permite al médico tratante comprender mejor el pronóstico y la evolución de estas infecciones.
Objetivo. Describir los perfiles de sensibilidad ante macrólidos y aminoglucósidos, de los cultivos identificados como complejo Mycobacterium avium, complejo M. abscessus o especie M. chelonae, en el Laboratorio Nacional de Referencia de Micobacterias durante los años 2018 a 2022.
Materiales y métodos. Se llevó a cabo un estudio descriptivo del perfil de sensibilidad a macrólidos y aminoglucósidos, de los cultivos identificados como complejo M. avium, complejo M. abscessus o M. chelonae, mediante la metodología GenoType® NTM-DR.
Resultados. Los cultivos del complejo M. avium fueron 159 (47,3 %), de los cuales, 154 (96,9 %) fueron sensibles y 5 (3,1 %) resistentes a los macrólidos; todos fueron sensibles a los aminoglucósidos. Del complejo M. abscessus se estudiaron 125 (37,2 %) cultivos, 68 (54,4 %) resultaron sensibles y 57 (45,6 %) resistentes a los macrólidos; solo un cultivo (0,8 %) fue resistente a los aminoglucósidos. De M. chelonae se analizaron 52 cultivos (15,5 %), todos sensibles a los macrólidos y aminoglucósidos.
Conclusiones. En las tres especies de micobacterias estudiadas, la resistencia contra la amikacina fue la menos frecuente. La identificación de las subespecies y los perfiles de sensibilidad permiten instaurar esquemas de tratamiento adecuados, especialmente en las micobacteriosis causadas por M. abscessus.

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Referencias bibliográficas

Falkinham J. Ecology of nontuberculous mycobacteria. Microorganisms. 2021;9:2262. https://doi.org/10.3390/microorganismos9112262

To K, Cao R, Yegiazaryan A, Owens J, Venketaraman V. General overview of nontuberculous mycobacteria opportunistic pathogens: Mycobacterium avium and Mycobacterium abscessus. J Clin Med. 2020;9:2541. https://doi.org/10.3390/jcm9082541

Akram SM, Rathish B, Saleh D. Mycobacterium chelonae infection. StatPearls (Internet). Treasure Island, FL: StatPearls Publishing; 2024.

Cobos-Trigueros N, Ateka O, Pitart C, Vila J. Macrólidos y cetólidos. Enferm Infecc Microbiol Clin. 2009;27:412-8. https://doi.org/10.1016/j.eimc.2009.06.002

Carreto L, González Y, Beltrán S. Enfermedad pulmonar causada por micobacterias no tuberculosas: diagnóstico, tratamiento y mecanismos de resistencia a los antimicrobianos. Neumol Cir Torax. 2021;80:141-53. https://doi.org/10.35366/100997

Da Mata O, Fernández S, Rodríguez M, Dewaard J. Mecanismos de resistencia en micobacterias de crecimiento rápido. Revista del Instituto Nacional de Higiene Rafael Rangel. 2016;47:95-124.

Esteban J, Navas E. Tratamiento de las infecciones producidas por micobacterias no tuberculosas. Enfermedades Infecciosas y Microbiología Clínica. 2018;36:586-92. https://doi.org/10.1016/j.eimc.2017.10.008

Jones R, Shier K, Master R, Bao J, Clark R. Current significance of the Mycobacterium chelonae-abscessus group. Diagn Microbiol Infect Dis. 2019;94:248-254. https://doi.org/10.1016/j.diagmicrobio.2019.01.021

Diel R, Lipman M, Hoefsloot W. High mortality in patients with Mycobacterium avium complex lung disease: A systematic review. BMC Infect Dis. 2018;18:206. https://doi.org/10.1186/s12879-018-3113-x

Johansen M, Herrmann J, Kremer L. Non-tuberculous mycobacteria and the rise of Mycobacterium abscessus. Nat Rev Microbiol. 2020;18:392-407. https://doi.org/10.1038/s41579-020-0331-1

Hain Lifescience. GenoType NTM-DR™. Versión 1.0. Hardwiesenstraße, Nehren: Hain Lifescience; 2019.

Illouz M, Alcaraz M, Roquet-Banères F, Kremer L. Mycobacterium abscessus, un modèle de résistance aux différentes classes d’antibiotiques. Med Sci (Paris). 2021;37:993-1001. https://doi.org/10.1051/medsci/2021164

Máiz-Carro L, Barbero-Herranz E, Nieto-Royo R. Infecciones respiratorias por micobacterias no tuberculosas. Medicina Clínica. 2018;150:191-7. https://doi.org/10.1016/j.medcli.2017.07.010

Wang W, Yang J, Wu X, Wan B, Wang H, Yu F, et al. Difference in drug susceptibility distribution and clinical characteristics between Mycobacterium avium and Mycobacterium intracellulare lung diseases in Shangai, China. J. Med Microbiol. 2021;70. https://doi.org/10.1099/jmm.0.001358

Mora A, Giraldo S, Castillo A, Ferro B. Comportamiento clínico de la infección y enfermedad causada por micobacterias no tuberculosas en Latinoamérica: Revisión de alcance. Rev Peru Med Exp Salud Pública. 2021;38:318-25. https://doi.org/10.17843/rpmesp.2021.382.6108

Maurer F, Pohle P, Kernbach M, Sievert D, Hillemann D, Rupp J, et al. Differential drug susceptibility patterns of Mycobacterium chimaera and other members of the Mycobacterium avium-intracellulare complex. Clin Microbiol Infect. 2019;25:379 e1-7. https://doi.org/10.1016/j.cmi.2018.06.010

Hajikhani B, Nasiri M, Hosseini S, Khalili F, Karimi-Yazdi M, Hematian A, et al. Clofazimine susceptibility testing of Mycobacterium avium complex and Mycobacterium abscessus: A meta-analysis study. J Glob Antimicrob Resist. 2021;26:188-93. https://doi.org/10.1016/j.jgar.2021.06.002

Wetzstein N, Kohl T, Andres S, Schultze T, Geil A, Kim E, et al. Comparative analysis of phenotypic and genotypic antibiotic susceptibility patterns in Mycobacterium avium complex. Int J Infect Dis. 2020;93:320-8. https://doi.org/10.1016/j.ijid.2020.02.059

Litvinov V, Makarova M, Galkina K, Khachaturiants E, Krasnova M, Guntupova L, et al. Drug susceptibility testing of slowly growing non-tuberculous mycobacteria using slomyco testsystem. PLoS ONE. 2018:13:e0203108. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0203108

Wassilew N, Hillemann D, Maurer F, Kohl T, Merker M, Brinkman F, et al. Evaluation of the GenoType® NTM DR for subspecies identification and determination of drug resistance in clinical M. abscessus isolates. Clin Microbiol. 2017;6:751-7. http://doi.org/10.4172/2327-5073.1000286

Ramírez A, Araque M. Patógenos emergentes multirresistentes: complejo Mycobacterium abscessus. Avan Biomed. 2017;6:203-15.

Bryant JM, Grogono DM, Rodriguez D, Everall I, Brown KP, Moreno P, et al. Emergence and spread of a human-transmissible multidrug-resistant non-tuberculous mycobacterium. Science. 2016;354:751-7. https://doi.org/10.1126/science.aaf8156

Weng Y, Huang C, Sy C, Wu K, Tsai H, Shin-Jung S, et al. Treatment for Mycobacterium abscessus complex-lung disease. J Formos Med Assoc. 2020;119:S58eS66. https://doi.org/10.1016/j.jfma.2020.05.028

Guo Q, Wei J, Zou W, Li Q, Qian X, Zhu Z. Antimicrobial susceptibility profiles of Mycobacterium abscessus complex isolates from respiratory specimens in Shanghai, China. J Glob Antimicrob Resist.. 2021;25:72-6. https://doi.org/10.1016/j.jgar.2021.02.024

Liu C, Song Y, He W, Liu D, He P, Bao J, et al. Non-tuberculous mycobacteria in China: Incidence and antimicrobial resistance spectrum from a nationwide survey. Infect Dis Poverty. 2021;10:59. https://doi.org/10.1186/s40249-021-00844-1

Ramírez A, Morcillo N, Imperiale B, Araque M, Waard J. Comparación y evaluación de métodos cuantitativos para determinar la susceptibilidad antimicrobiana de cepas del complejo Mycobacterium abscessus. Rev Cienc Salud. 2018;16:69-81. https://doi.org/10.12804/revistas.urosario.edu.co/revsalud/a.6491

Gu C, Zhao C, Hofstaedter C, Tebas P, Glaser L, Baldassano R, et al. Investigating hospital Mycobacterium chelonae infection using whole genome sequencing and hybrid assembly. PLoS ONE. 2020;15:e0236533. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0236533

Özdemir H, Şimşek H, Çöplü N, Çağatay M. Percentages of drug resistance detected in non-tuberculous mycobacteria isolated from pulmonary samples. FLORA. 2020;25:372-82. https://doi.org/10.5578/flora.69616

Karami-Zarandi M, Bahador A, Gizaw-Feysia S, Kardan-Yamchi J, Hasan-Nejad M, Mosavari N, et al. Identification of non-tuberculosis mycobacteria by line probe assay and determination of drug resistance patterns of isolate in Iranian patients. Archives of Razi Institute. 2019;74:375-84. https://doi.org/10.22092/ari.2019.127144.1372

Cómo citar
1.
Llerena C, Valbuena YA, Zabaleta AP, García AN. Prevalencia de la resistencia a macrólidos y aminoglucósidos en los complejos Mycobacterium avium y M. abscessus y en Mycobacterium chelonae identificados en el Laboratorio Nacional de Referencia de Colombia entre el 2018 y el 2022. biomedica [Internet]. 30 de mayo de 2024 [citado 26 de junio de 2024];44(2):182-90. Disponible en: https://revistabiomedica.org/index.php/biomedica/article/view/7197

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2024-05-30
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