Identificación etiológica de agentes virales de la encefalitis aguda en Guadalajara, México, 2011-2015
Resumen
Introducción. La encefalitis viral aguda se define como un proceso inflamatorio asociado a disfunción neurológica con desenlace fatal o daño grave permanente. En México no se han hecho estudios de identificación directa de los agentes etiológicos causales de la encefalitis viral aguda.
Objetivo. Identificar mediante PCR en tiempo real los principales agentes virales causantes de encefalitis viral aguda en México.
Materiales y métodos. Se obtuvo el líquido cefalorraquídeo de pacientes con sospecha de encefalitis viral que ingresaron al servicio de urgencias del Hospital Civil Fray Antonio Alcalde. Se extrajeron ácidos nucleicos para identificar los patógenos mediante PCR y PCR con transcripción inversa en tiempo real.
Resultados. Se captaron un total de 66 pacientes entre el 2011 y el 2014. En 16 de los casos (24 %) se identificó el agente viral y se encontró que el principal agente causal fue el enterovirus, con ocho casos (50 %), seguido del virus del herpes simple (HSV: 37 %), con seis casos, y el citomegalovirus (CMV: 12,5 %), con dos casos. El promedio de edad fue de 25 años (0-70 años). Los casos positivos predominaron en los varones (63,3 %) y se estableció un predominio estacional en otoño (37,5 %).
La mayoría de los pacientes presentó fiebre (48,4 %) o cefalea (36,3 %) y, en menor proporción, convulsiones, confusión y debilidad muscular (30,3 %) seguidas de desorientación (28,75 %) y apatía (25,7 %). En dos de los casos se observó el signo de Kerning (3 %) y en otros dos, el signo de Brudzinski (3 %).
Conclusiones. La PCR en líquido cefalorraquídeo es una técnica de diagnóstico adecuada para la identificación de virus causales de encefalitis viral, lo cual permite prescribir los medicamentos específicos.
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Referencias bibliográficas
Hamid JS, Meaney C, Crowcroft NS, Granerod J, Beyene J, UK Health Protection Agency Aetiology of Encephalitis Study Group. Potential risk factors associated with human encephalitis: Application of canonical correlation analysis. BMC Med Res Methodol. 2011;11:120. https://doi.org/10.1186/1471-2288-11-120
Tunkel AR, Glaser CA, Bloch KC, Sejvar JJ, Marra CM, Roos KL, et al. The management of encephalitis: Clinical practice guidelines by the Infectious Diseases Society of America. Clin Infect Dis. 2008;47:303-27. https://doi.org/10.1086/589747
Stahl JP, Mailles A, Dacheux L, Morand P. Epidemiology of viral encephalitis in 2011. Med Mal Infect. 2011;41:453-64. https://doi.org/10.1016/j.medmal.2011.05.015
Somand D, Meuer W. Central nervous system infections. Emerg Med Clin North Am. 2009;27:89-100. https://doi.org/10.1016/j.emc.2008.07.004
Mailles A, Stahl JP. Infectious encephalitis in France in 2007: A national prospective study. Clini Infect Dis. 2009;49:1838-47. https://doi.org/10.1086/648419
Arroyo HA, Bologna R. Viral encephalitis. Rev Neurol. 1997;142:912-9.
Mace SE. Central nervous system infections as a cause of an altered mental status? What is the pathogen growing in your central nervous system? Emerg Med Clin North Am. 2010;28:535-70. https://doi.org/10.1016/j.emc.2010.03.002
Cho TA, Mckendall RR. Clinical approach to the syndromes of viral encephalitis, myelitis, and meningitis. Handb Clin Neurol. 2014;123:89-121. https://doi.org/10.1016/B978-0-444-53488-0.00004-3
Watzinger F, Suda M, Preuner S, Baumgartinger R, Ebner K, Baskova L, et al. Real-time quantitative PCR assays for detection and monitoring of pathogenic human viruses in immunosuppressed pediatric patients. J Clin Microbiol. 2004;42:5189-98. https://doi.org/10.1128/JCM.42.11.5189–5198.2004
Debiasi RL, Tyler KL. Molecular methods for diagnosis of viral encephalitis. Clin Microbiol Rev. 2004;17:903-25. https://doi.org/10.1128/CMR.17.4.903-925.2004
Rodríguez SR, Gómez BD, Pallansch M. Brote epidémico de meningitis viral causado por virus Echo tipo 30. Bol Med Hosp Infant Mex. 1992;49:412-5.
Rodríguez ML, Rodríguez DR, Blitvich BJ, López MA, Fernández-Salas I, Jiménez JR, et al. Serologic surveillance for West Nile virus and other flaviviruses in febrile patients, encephalitic patients, and asymptomatic blood donors in northern México. Vector Borne Zoonotic Dis. 2010;10:151-7. https://doi.org/10.1089/vbz.2008.0203
Velásquez-Pérez L, Ramírez-Crescencio MA. Neurological disease surveillance and mandatory reporting: A trend and outcome of the national neurological institute of health in México city from 2005 to 2011. Gac Med Mex. 2014;150:540-51.
Stankiewicz PI, Piotrowska A. Meningitis and encephalitis in Poland in 2013. Przegl Epidemiol. 2015;69:229-34.
Stahl JP, Mailles A. What is new about epidemiology of acute infectious encephalitis? Curr Opin Neurol. 2014;27:337-41. https://doi.org/10.1097/WCO.0000000000000097
Fitch MT, Abrahamian FM, Moran GJ, Talan DA. Emergency department management of meningitis and encephalitis. Infect Dis Clin of North Am. 2008;22:33-52. https://doi.org/10.1016/j.idc.2007.10.001
Li W, Zhang X, Chen X, Cheng YP, Wu YD, Shu Q. Epidemiology of childhood enterovirus infections in Hangzhou, China. Virol J. 2015;12:58. https://doi.org/10.1186/s12985-015-0294-4
Flóres-González JC, Jordán-García I, Turón-Viñas E, Montero-Valladares C, Téllez-González C, Fernández-Carrión F, et al. Etiología, presentación clínica y evolución neurológica de las encefalitis víricas graves en la edad pediátrica (estudio ECOVE). Rev Neurol. 2015;61:7-13.
Fica A, Pérez C, Reyes P, Gallardo S, Calvo X, Salinas AM. Serie clínica de 15 casos confirmados por reacción de polimerasa en cadena. Rev Chil Infect. 2005;22:38-46. https://doi.org/10.4067/S0716-10182005000100005
Hebant B, Miret N, Bouwyn JP, Delafosse E, Lefaucheur R. Absence of pleocytosis in cerebrospinal fluid does not exclude herpes simplex virus encephalitis in elderly adults. J Am Geriatr Soc. 2015;63:1278-9. https://doi.org/10.1111/jgs.13493
Patel B, Bhatt GC, Kushwaha KP, Gore MM. Japanese encephalitis presenting without cerebrospinal fluid pleocytosis. Pediatr Infect Dis J. 2015;34:1416. https://doi.org/10.1097/INF.0000000000000911
Doughty CT, Yawetz S, Lyons J. Emerging causes of arbovirus encephalitis in North America: Powassan, Chikungunya, and Zika viruses. Curr Neurol Neurosci Rep. 2017;17:12. https://doi.org/10.1007/s11910-017-0724-3
Acevedo N, Waggoner J, Rodríguez M, Rivera L, Landivar J, Pinsky B, et al. Zika virus, Chikungunya virus, and dengue virus in cerebrospinal fluid from adults with neurological manifestations, Guayaquil, Ecuador. Front Microbiol. 2017;8:42. https://oi.org/10.3389/fmicb.2017.00042
Mailles A, Stahl JP, Bloch KC. Update and new insights in encephalitis. Clin Microbiol Infect. 2017;23: 607-13. https://doi.org/10.1016/j.cmi.2017.05.002
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- Concepción Judith Puerta, Johana María Guevara, Paula Ximena Pavía, Marleny Montilla, Rubén Santiago Nicholls, Edgar Parra, Yuli Katherine Barrera, Evaluación de las pruebas de PCR TcH2AF-R y S35-S36 para la detección de Trypanosoma cruzi en tejido cardiaco de ratón , Biomédica: Vol. 28 Núm. 4 (2008)
- Marcel Marín, Yudy Alexandra Aguilar, José Robinson Ramírez, Omar Triana, Carlos Enrique Muskus, El análisis molecular y el inmunogénico sugieren la ausencia de las proteínas hidrofílicas de superficie en Leishmania (Viannia) panamensis , Biomédica: Vol. 28 Núm. 3 (2008)
- Milagros Joya , Ricardo Heredia , Daniel Bastidas, Gilberto Bastidas , Detección de infección por Chlamydia trachomatis en mujeres sexualmente activas en Venezuela , Biomédica: Vol. 42 Núm. 3 (2022)
- Concepción Judith Puerta, Paula Ximena Pavia, Marleny Montilla, Carolina Flórez, Giomar Herrera, Juan Manuel Ospina, Fred Manrique, Rubén Santiago Nicholls, Reporte del primer caso de enfermedad de Chagas transplacentaria analizado por AP-PCR en Moniquirá, Boyacá , Biomédica: Vol. 29 Núm. 4 (2009)
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